從2013年張鋒[1]和GeorgeChurch[2]第一次使用CRISPR-Cas9編輯人體細(xì)胞算起,這項(xiàng)技術(shù)在人體細(xì)胞中的使用已經(jīng)走過5個(gè)年頭。
雖然CRISPR被科學(xué)家使用的很溜,并已經(jīng)走到臨床試驗(yàn)階段;但我們對Cas9的切割原理和切割后細(xì)胞修復(fù)機(jī)制的了解還比較少,甚至可以說它們還是個(gè)黑盒子。
前不久,上海交通大學(xué)吳強(qiáng)教授課題組在MolecularCell上發(fā)表了一篇文章,他們發(fā)現(xiàn)Cas9切割DNA雙鏈可以產(chǎn)生突出末端,而不僅僅是平頭末端,這顛覆了我們對Cas9切割的認(rèn)知[3]。
近日,加州大學(xué)伯克利分校的JacobCorn團(tuán)隊(duì)在Cas9切割后的修復(fù)機(jī)制上也取得了顛覆認(rèn)知的重大突破。
總的來說,Corn團(tuán)隊(duì)這次解決了一個(gè)長期困擾科學(xué)家的問題:用CRISPR-Cas9切斷細(xì)胞的DNA之后,細(xì)胞究竟是如何選擇用哪種方式修補(bǔ)斷裂的缺口的?
更重要的是,他們的這個(gè)發(fā)現(xiàn)甚至可以讓科學(xué)家以后根據(jù)自己的需求,操縱細(xì)胞的修復(fù)方式,讓細(xì)胞基因組DNA在被Cas9切斷后,按照需求去修復(fù)缺口。正真實(shí)現(xiàn)精準(zhǔn)切割,精準(zhǔn)修補(bǔ)。
這對很多需要做基因修復(fù)的遺傳疾病而言,無疑是個(gè)好消息。上周四,Corn團(tuán)隊(duì)的這一重要研究成果發(fā)表在《自然遺傳學(xué)》上[4]。
CRISPR-Cas9只是上帝的手術(shù)刀,修復(fù)還是得靠細(xì)胞
一直以來,我們都形象地把CRISPR-Cas9叫做“上帝的手術(shù)刀”,而不把它叫做“上帝的針線包”,主要是因?yàn)镃as9只負(fù)責(zé)精準(zhǔn)的切斷DNA,修復(fù)的任務(wù)要交給細(xì)胞自身。
通常情況下,CRISPR-Cas9切斷DNA形成的雙鏈斷裂后,細(xì)胞會很快啟動(dòng)緊急修復(fù)機(jī)制。其中最主要的兩條是:非同源末端連接和同源重組。
其中非同源末端連接修復(fù)機(jī)制被科學(xué)家用的最多,效率也最高。它就是不管三七二十一,盡快把斷裂的DNA連接起來,維持DNA的穩(wěn)定。這種修復(fù)方式絕大部分情況下會在切割位點(diǎn)產(chǎn)生隨機(jī)插入或缺失,直接導(dǎo)致基因功能喪失。
無論如何,對細(xì)胞而言,損失一個(gè)基因,比掛了肯定好多了。這種修復(fù)方式其實(shí)也是細(xì)胞的最常見修復(fù)方式。鑒于這種修復(fù)方式的特點(diǎn),它被廣泛用于基因功能的研究。
而同源重組修復(fù)機(jī)制,則是在有同源供體DNA序列的配合下,用一段正確的基因序列替換原本錯(cuò)誤的基因序列[5]。也就是我們常說的:哪里壞了,換哪里??茖W(xué)家和醫(yī)生治療基因變異導(dǎo)致的疾病,依賴的就是這種修復(fù)方式[6]。
目前,同源重組修復(fù)過程中使用的外源DNA模版有兩種:一種是雙鏈DNA,另一種是單鏈DNA模版修復(fù)(SSTR)。
CRISPR/Cas9切斷DNA之后的可能修復(fù)機(jī)制
不過,大量的研究表明,把雙鏈DNA作為模版修復(fù)斷裂的DNA在絕大多數(shù)細(xì)胞類型中是非常低效的[7]。相較而言呢,以單鏈DNA為修復(fù)模版的SSTR模式在人類細(xì)胞中倒是很高效[8],所以使用的也比較多。
雖然SSTR效率高,但是Corn團(tuán)隊(duì)在不同的人類癌細(xì)胞系中做研究還是發(fā)現(xiàn),SSTR的修復(fù)效率還是有很大的差異,從完全無效的0%,到非常高效的30%。這似乎暗示,SSTR是否能完成修復(fù)與細(xì)胞類型有一定的關(guān)聯(lián)。
再仔細(xì)一想呢,不同細(xì)胞類型的基因表達(dá)水平實(shí)際上是相差很大的,是不是某些特殊的DNA修復(fù)通路的打開或關(guān)閉,影響了SSTR修復(fù)的效率呢?
如果我們能發(fā)現(xiàn)影響SSTR修復(fù)機(jī)制的相關(guān)基因,那么在以后的臨床應(yīng)用中,在編輯基因的同時(shí),特異性的調(diào)節(jié)相關(guān)基因的表達(dá)水平。那轉(zhuǎn)化效率就可以大幅提升,治療效果也會穩(wěn)步提升啊。
研究人員趕緊去查查相關(guān)資料。
很幸運(yùn),SSTR在人體中修復(fù)的機(jī)制還鮮為人知。如果能解決這個(gè)困擾著很多科學(xué)家的問題,那么Corn團(tuán)隊(duì)肯定很開心。
此處應(yīng)該再次出現(xiàn)斯托帕德那句話:“再一次一無所知,從頭開始……這讓我很開心。”
聰明的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
Corn團(tuán)隊(duì)的研究人員究竟有多開心我是沒辦法知道了。不過,當(dāng)我看到他們解決問題的思路時(shí),我何止是很開心,簡直是很興奮,以至于喝了5杯濃茶也沒驅(qū)散的午間睡意,瞬間消散。
他們首先做了一個(gè)假設(shè):既然是DNA斷裂的修復(fù)出現(xiàn)了不穩(wěn)定的問題,那問題應(yīng)該就處在細(xì)胞內(nèi)跟DNA修復(fù)有關(guān)的基因上;如果在調(diào)控那些修復(fù)基因表達(dá)的同時(shí),同步開展CRISPR-Cas9的剪切,和切斷后的SSTR修復(fù),不就可以通過二者之間的相互作用找到影響SSTR的關(guān)鍵基因了嗎!
于是,研究人員首先找到了2000多個(gè)跟DNA修復(fù)有關(guān)的基因。然后做了一個(gè)非常聰敏的設(shè)計(jì)。
他們創(chuàng)造性的使用了CRISPRi基因沉默技術(shù)[9]、CRISPR-Cas9基因編輯技術(shù)和熒光標(biāo)記技術(shù),創(chuàng)建了一個(gè)可視化的“沉默-編輯”平臺。
首先,他們給所有的細(xì)胞加了個(gè)藍(lán)色熒光基因,讓這些細(xì)胞發(fā)藍(lán)光。
所有的細(xì)胞都藍(lán)瑩瑩的,真好看~
然后,給這些細(xì)胞分別裝入用來沉默修復(fù)相關(guān)基因的CRISPRi基因沉默系統(tǒng)。每個(gè)細(xì)胞沉默掉一個(gè)修復(fù)相關(guān)基因,在一個(gè)有數(shù)百萬個(gè)細(xì)胞的群體中,就產(chǎn)生了2000個(gè)基因分別被沉默掉的細(xì)胞庫。
緊接著,研究人員就要對那個(gè)藍(lán)色熒光蛋白基因下手了。
他們把靶向切割藍(lán)色熒光蛋白基因的CRISPR-Cas9編輯系統(tǒng),以及一個(gè)與藍(lán)色熒光蛋白基因有同源臂的綠色熒光蛋白基因的單鏈DNA,一起轉(zhuǎn)到上面的那個(gè)細(xì)胞庫里。
接下里會發(fā)生什么,你們肯定能想到把,還需要我說嗎~
忍不住了,我還是說下吧。
理想狀況下(我們只說理想狀況下),上面的細(xì)胞庫顏色會發(fā)生如下變化。有些還是藍(lán)色,意味著基因編輯失??;有一些細(xì)胞沒有顏色了,大概率意味著意味著Cas9把藍(lán)色熒光蛋白基因切斷了,然后細(xì)胞按照非同源末端連接的方式又把它隨便連上了,導(dǎo)致基因功能喪失了;剩下的細(xì)胞成功變綠了,這些細(xì)胞實(shí)現(xiàn)了SSTR修復(fù)。
研究人員用流式細(xì)胞儀按照顏色,給所有的細(xì)胞分分成三撥:有6.8%的細(xì)胞還保持這藍(lán)色,有67.5%的細(xì)胞不顯色了,22.8%的細(xì)胞變成了綠色。
加起來是97.1%,還有2.9%的細(xì)胞怎么了?這些細(xì)胞出現(xiàn)了理想狀況之外的情況,我們就不管它們了。
未被重視的“交通信號燈”
有了上面的細(xì)胞。接下來的事情就好辦了,用二代測序技術(shù),分析分析這三個(gè)細(xì)胞群體中g(shù)RNA的水平變化,就可以知道哪些基因會影響SSTR的效率了。
這一分析不要緊,研究人員發(fā)現(xiàn)之前認(rèn)為與SSTR修復(fù)有關(guān)的DNA修復(fù)基因,似乎與SSTR關(guān)系并不大。
讓研究人員意外的是,那些處在范科尼貧血(Fanconianemia;FA)的通路上的基因,與SSTR關(guān)系密切。
范科尼貧血是瑞士兒科醫(yī)生GuidoFanconi在1927年首次報(bào)道的,它是一種罕見的常染色體隱性遺傳性血液系統(tǒng)疾病[10]。1992年報(bào)道了4個(gè)可能與FA相關(guān)的基因,到現(xiàn)在已經(jīng)鑒定出了20多個(gè)與FA的發(fā)病有關(guān)的基因變異。
一直以來,研究人員認(rèn)為,F(xiàn)A通路上的基因編碼的蛋白與識別和修復(fù)基因組中的鏈間交聯(lián)(ICL)有關(guān)。并不認(rèn)為它與CRISPR-Cas9導(dǎo)致的DNA雙鏈斷裂修復(fù)有關(guān)。
這個(gè)發(fā)現(xiàn),被研究人員視為至寶。
為了進(jìn)一步證實(shí)FADNA修復(fù)通路上的蛋白與SSTR修復(fù)模式效率之間的關(guān)系。研究人員用CRISPRi分別穩(wěn)定地敲低了FA路徑中的FANCA,F(xiàn)ANCD2,F(xiàn)ANCE,F(xiàn)ANCF,F(xiàn)ANCL,HELQ,UBE2T,USP1和WDR48。發(fā)現(xiàn)SSTR修復(fù)模式效率顯著下降。
如果在敲低的同時(shí),用cDNA在細(xì)胞內(nèi)穩(wěn)定地表達(dá)那個(gè)敲低的蛋白,讓它們的表達(dá)恢復(fù)到野生的水平。研究人員發(fā)現(xiàn),SSTR修復(fù)模式效率提升8倍,回升到正常水平。
這些研究表明,F(xiàn)A通路中的許多基因?qū)STR修復(fù)模式是必需的。
更有意思的是,研究人員還發(fā)現(xiàn)FA通路只影響SSTR,它不會促進(jìn)非同源末端連接。總體來說,在DNA被切斷之后,細(xì)胞修復(fù)DNA的首選方式是非同源末端連接,這也是為什么這種修復(fù)方式一直比例最高。
而FA通路更像個(gè)“交通信號燈”:在FA通路不活躍的時(shí)候,所有的車都朝一個(gè)方向(非同源末端連接)開;但如果FA通路很活躍,那么它就要指揮其中一部分車往另一個(gè)方向(SSTR)走。
原來是這樣!
用論文第一作者ChrisRichardson的話說,就是“FA通路是維持非同源末端連接和SSTR之間平衡的”。
后記
“治療鐮狀細(xì)胞貧血,成功的機(jī)會與用正確的基因替代突變的基因效率密不可分,”Richardson這么評價(jià)自己的研究[11],“如果你從患者那里獲得了100萬個(gè)細(xì)胞,30%-40%的替換率肯定比10%的好多了。”
現(xiàn)在看來,Richardson的愿望真的有可能實(shí)現(xiàn)了。
將來,科學(xué)家可以通過分析細(xì)胞基因的表達(dá)水平,提前預(yù)知一類細(xì)胞是否適合SSTR。如果這類細(xì)胞SSTR效率低,甚至可以考慮臨時(shí)激活FA通路。
無論如何,科學(xué)家掌握了Cas9切割后的這層修復(fù)機(jī)制,未來給患者換個(gè)基因啥的,那簡直是效率高多了。